Full validation of curcumin analytical method by LC-MS/MS points out that the degree of hemolysis in plasma affects the quantitation: application in dog plasma study

Authors

  • Mariana Dolores Laboratory of Pharmaceutical Development Tests, Multidisciplinary Research Unit (UIM), Faculty of Higher Education Cuautitlán, National Autonomous University of Mexico, Carr. Cuautitlán-Teoloyucan Km 2.5, San Sebastian Xhala, 54714 Cuautitlán Izcalli, Mexico state.
  • Alma Villaseñor Centre for Metabolomics and Bioanalysis (CEMBIO), Pharmacy faculty, CEU San Pablo University, Campus Monteprincipe, Boadilla del Monte, 28668 Madrid, Spain.
  • Alma Revilla Vázquez Faculty of Higher Education Cuautitlán, Analytical method development laboratory, National Autonomous University of Mexico. Mexico State
  • Helgi Jung
  • Victor Hugo Santiago Rios Laboratory of Pharmaceutical Development Tests, Multidisciplinary Research Unit (UIM), Faculty of Higher Education Cuautitlán, National Autonomous University of Mexico, Carr. Cuautitlán-Teoloyucan Km 2.5, San Sebastian Xhala, 54714 Cuautitlán Izcalli, Mexico state.
  • Raquel López-Arellano Laboratory of Pharmaceutical Development Tests, Multidisciplinary Research Unit (UIM), Faculty of Higher Education Cuautitlán, National Autonomous University of Mexico, Carr. Cuautitlán-Teoloyucan Km 2.5, San Sebastian Xhala, 54714 Cuautitlán Izcalli, Mexico state.

DOI:

https://doi.org/10.29356/jmcs.v62i4.662

Keywords:

Curcumin, hemolysis, LC MS/MS, SRM, dog plasma

Abstract

Abstract. Curcumin has gained great attention in the last decades due to its fascinating properties for humans, such as anti-inflammatory or as cytotoxic against cancer. These effects are also claimed for pets such as cats and dogs, where curcumin administration is a daily practice routine. However, curcumin presents poor oral bioavailability, driving scientists to look for new delivery systems. In the last decades, several analytical methods for the quantification of curcumin in plasma have been published. To our knowledge there are no published reports on the effect of the level of hemolysis in the determination of this compound. In the present paper, a highly specific, sensitive and selective method is presented using Molecular Reaction Monitoring (SRM) using positive ionization (ESI+) mode. Curcumin and clopidogrel bisulfate – used as internal standard (IS) – were separated on an Acquity UPLC BECH Shield RP 18 column (1.7µm, 2.1 X 100mm) with 0.1% formic acid in acetonitrile and water in proportion of 60:40 (v/v). The analyte transitions were 369.3→177.06 m/z for curcumin and 322→212.05 m/z for IS. The method was fully validated and showed good linearity (R2 ≥ 0.999) over the range of 3-160 ng/mL. The Relative Standard Deviation (RSD) were less than 6% for intra-and inter-day analysis and recovery spanned 85-95%. We proved that the degree of hemolysis impaired curcumin quantitation. This method was applied to test curcumin bioavailability in both a mucoadhesive nanocapsule formulation and traditional capsules in dogs that attended routine veterinary consultation.

Resumen. La curcumina ha ganado gran atención en las últimas décadas debido a sus propiedades terapéuticas para los humanos, como antiinflamatorio o citotóxico contra el cáncer. Estos efectos también se observan en pequeñas especies como gatos y perros, donde la administración de curcumina se ha vuelto una alternativa. Sin embargo, la curcumina presenta una baja biodisponibilidad oral, lo que impulsa a los científicos a buscar nuevos sistemas de administración. En las últimas décadas, se han publicado varios métodos analíticos para la cuantificación de curcumina en plasma. Actualmente, no hay informes publicados sobre el efecto del grado de hemólisis en la determinación de este compuesto. En este trabajo se desarrolló un método específico, sensible y selectivo utilizando el Monitoreo de reacción seleccionado (SRM) en modo de ionización positiva (ESI +). La curcumina y el bisulfato de clopidogrel, utilizado como patrón interno (IS), se separaron en una columna Acquity UPLC BECH Shield RP 18 (1,7 μm, 2,1 X 100 mm) con ácido fórmico al 0,1% en acetonitrilo y agua a una proporción de 60:40 (v/v). Las transiciones de los analitos fueron 369.3 → 177.06 m/z para curcumina y 322 → 212.05 m/z para IS. El método fue validado y demostró ser lineal (r2 ≥ 0.999) en el rango de 3-160 ng/mL. La desviación relativa estándar (RSD) fue inferior al 6% para el análisis intra e interdía y el porcentaje de recuperación fue 85-95%. Se descubrió que el grado de hemólisis afecta la cuantificación de curcumina. El método desarrollado se aplicó para evaluar la biodisponibilidad de curcumina tanto en una formulación de nanocápsulas mucoadhesivas como en cápsulas tradicionales en perros que asistieron a consultas veterinarias de rutina.

Downloads

Download data is not yet available.

References

Noorafshan, A.; Ashkani-Esfahani, S., Curr Pharm Des 2013, 19 (11), 2032-46.

Vaughn, A. R.; Branum, A.; Sivamani, R. K., Phytother Res 2016, 30 (8), 1243-64. DOI: 10.1002/ptr.5640.

Nguyen, T. A.; Friedman, A. J., J Drugs Dermatol 2013, 12 (10), 1131-7.

Aggarwal, B. B.; Harikumar, K. B., Int J Biochem Cell Biol 2009, 41 (1), 40-59. DOI: 10.1016/j.biocel.2008.06.010

Mantzorou, M.; Pavlidou, E.; Vasios, G.; Tsagalioti, E.; Giaginis, C., Phytother Res 2018. DOI: 10.1002/ptr.6037

Basnet, P.; Skalko-Basnet, N., Molecules 2011, 16 (6), 4567-98. DOI: 10.3390/molecules16064567

Zhang, S.; Zou, J.; Li, P.; Zheng, X.; Feng, D., J Agric Food Chem 2018, 66 (2), 449-456. DOI: 10.1021/acs.jafc.7b04260

Aggarwal, B. B. S., Young-Joon. Shishodia, S., The Molecular Targets and Therapeutic Uses of Curcumin in Health and Disease. Springer US: 2007; p 490.

Sgorlon, S.; Stefanon, B.; Sandri, M.; Colitti, M., Res Vet Sci 2016, 109, 142-148. DOI: 10.1016/j.rvsc.2016.10.005

Castrogiovanni, P.; Trovato, F. M.; Loreto, C.; Nsir, H.; Szychlinska, M. A.; Musumeci, G., Int J Mol Sci 2016, 17 (12). DOI:10.3390/ijms17122042

Helson, L.; Bolger, G.; Majeed, M.; Vcelar, B.; Pucaj, K.; Matabudul, D., Anticancer Res 2012, 32 (10), 4365-70.

Prasad, S.; Tyagi, A. K.; Aggarwal, B. B., Cancer Res Treat 2014, 46 (1), 2-18. DOI: 10.4143/crt.2014.46.1.2

Vareed, S. K.; Kakarala, M.; Ruffin, M. T.; Crowell, J. A.; Normolle, D. P.; Djuric, Z.; Brenner, D. E., Cancer Epidemiol Biomarkers Prev 2008, 17 (6), 1411-7. DOI: 10.1158/1055-9965

Herebian, D.; Choi, J. H.; Abd El-Aty, A. M.; Shim, J. H.; Spiteller, M., Biomed Chromatogr 2009, 23 (9), 951-65. DOI: 10.1002/bmc.1207

Avula, B.; Wang, Y.-H.; Khan, I. A., Journal of Chromatography & Separation Techniques. 2012, 3 (1), 3-8. DOI: 10.4172/2157-7064.1000120

Ashraf, K.; Mujeeb, M.; Ahmad, A.; Ahmad, N.; Amir, M., J Chromatogr Sci 2015, 53 (8), 1346-52. DOI: 10.1093/chromsci/bmv023

Cao, Y.; Xu, R. X.; Liu, Z., J Chromatogr B Analyt Technol Biomed Life Sci 2014, 949-950, 70-8. DOI: 10.1016/j.jchromb.2013.12.039

Ramalingam, P.; Ko, Y. T., J Chromatogr B Analyt Technol Biomed Life Sci 2014, 969, 101-8. DOI: 10.1016/j.jchromb.2014.08.009

Hao, K.; Zhao, X. P.; Liu, X. Q.; Wang, G. J., Chromatographia 2006, 64 (9-10), 531-535. DOI: 10.1365/s10337-006-0047-z

Yang, K. Y.; Lin, L. C.; Tseng, T. Y.; Wang, S. C.; Tsai, T. H., J Chromatogr B Analyt Technol Biomed Life Sci 2007, 853 (1-2), DOI: 183-9. 10.1016/j.jchromb.2007.03.010

Pawar, Y. B.; Shete, G.; Popat, D.; Bansal, A. K., Eur J Pharm Sci 2012, 47 (1), 56-64. DOI: 10.1016/j.ejps.2012.05.003

Liu, Y.; Siard, M.; Adams, A.; Keowen, M. L.; Miller, T. K.; Garza, F.; Andrews, F. M.; Seeram, N. P., J Pharm Biomed Anal 2018, 154, 31-39. DOI: 10.1016/j.jpba.2018.03.014

Singh S. P., W.; Jain, G. K., Journal of Bioanalysis & Biomedicine. 2010, 2 (4), 79-84. DOI: 10.4172/1948-593X.1000027

Li, R.; Qiao, X.; Li, Q.; He, R.; Ye, M.; Xiang, C.; Lin, X.; Guo, D., J Chromatogr B Analyt Technol Biomed Life Sci 2011, 879 (26), 2751-8. DOI: 10.1016/j.jchromb.2011.07.042

Ma, W.; Wang, J.; Guo, Q.; Tu, P., J Pharm Biomed Anal 2015, 111, 215-21. DOI: 10.1016/j.jpba.2015.04.007

Chen, Z.; Sun, D.; Bi, X.; Zeng, X.; Luo, W.; Cai, D.; Zeng, Q.; Xu, A., Phytomedicine 2017, 27, 15-22. DOI: 10.1016/j.phymed.2017.01.012

The European Agency for the Evaluation of Medicinal Products. VICH Topic GL1. Guideline on validation of analytical procedures:definition and terminology. London, UK. CVMP/VICH/590/98-FINAL, 1998.

The European Agency for the Evaluation of Medicinal Products. VICH Topic GL2. Guideline on validation of analytical procedures: methodology. London, UK. CVMP/VICH/591/98-FINAL, 1998.

Wahlang, B.; Pawar, Y. B.; Bansal, A. K., Eur J Pharm Biopharm 2011, 77 (2), 275-82. DOI: 10.1016/j.ejpb.2010.12.006

Published

2019-04-23

Issue

Section

Regular Articles

Most read articles by the same author(s)